 |
|
|
БИОЛОГИЯ ПОЧВ |
Глава 2. УЧАСТИЕ ПОЧВЕННЫХ МИКРООРГАНИЗМОВ В ЦИКЛАХ ОСНОВНЫХ БИОГЕННЫХ ЭЛЕМЕНТОВ В БИОСФЕРЕ И ПОЧВООБРАЗОВАТЕЛЬНЫХ ПРОЦЕССАХ
|
Смотрите также:
Мейен - Из истории растительных династий
Биографии биологов, почвоведов
|
МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ ЭКОЛОГИЧЕСКИХ ФУНКЦИЙ И ИНДИКАТОРНЫХ СВОЙСТВ ПОЧВЕННЫХ МИКРООРГАНИЗМОВ
ВЫЯВЛЕНИЕ МИКРООРГАНИЗМОВ, УЧАСТВУЮЩИХ В КРУГОВОРОТЕ УГЛЕРОДА
Разложение крахмала. Для выделения микроорганизмов, гидро- лизующих крахмал, производят посев из почвенной суспензии на агар с 1% растворимого или оклейстеризованного крахмала в чашках Петри. Вокруг колоний микроорганизмов, способных гидролизовать крахмал, образуются прозрачные ореолы.
Положив комочки почвы на агар, можно обнаружить микроорганизмы, разлагающие крахмал в почве.
Если чашки залить раствором йода, то среда окрасится в синий цвет. Зоны вокруг колоний окрасятся либо в красно-бурый цвет — гидролиз дошел до стадии декстринов, либо они останутся бесцветными — гидролиз прошел до стадии образования сахара. Наилучшие результаты в опытах по разложению крахмала получаются при работе с растворимым крахмалом.
Разложение пектина. Пектинразлагающие микроорганизмы обладают ферментами-пектиназами, действие которых на растительную ткань проявляется в размягчении и распаде на отдельные клетки — мацерации растительной ткани. Отбор культур микроорганизмов, обладающих пектиназами, проводят по их мацерирующей способности. Культуры микроорганизмов выращивают в картофельном отваре (200 s тертого картофеля в 1 л воды кипятят 15 мин, затем фильтруют через марлю и стерилизуют) в течение 10 дней при 24°. Затем культуральную жидкость в объеме 20—25 мл выливают в чашки Петри, в них опускают тонкие срезы картофеля. Мацерацию картофеля определяют" после 6-часового выдерживания в термостате при 40° с помощью тонкой иглы. При наличии мацерации клетки отделяются друг от друга, и срез картофеля размягчается. Мацерация свидетельствует о присутствии в культуральной жидкости пектолитических ферментов,, в частности протопектиназы.
Присутствие пектолитических ферментов в культурах микроорганизмов можно выявить и по наличию зон осветления и разложения пектина в местах инокуляции микроорганизмов на плотных средах, покрытых слоем 2%-ного растворимого пектина. В качестве плотной, питательной среды может быть использован почвенный агар.
Обнаружение пектинэстеразы проводят в помощью посева на специальную среду следующего состава: картофельный бульон — 1000 мл, пектин — 7 г; дрожжевой автолизат — 5 мл; тиогликолевая кислота — 1 мл; 0,5%-ный бромтимоловый синий — 1 мл. Среду стерилизуют при 0,5 атм 30 мин. После стерилизации рН среды доводят до 7,2—7,5 стерильной 10%-ной NaOH. Инкубацию посевов производят при 37°. На 1, 2, 3 и 4-е сутки роста определяют изменение значения рН по исчезновению окраски индикатора. Наличие полигалактуроназы в культурах микроорганизмов выявляют, высевая культуры на среду следующего состава: картофельный бульон — 1000 мл; пектин — 13 г; дрожжевой автолизат — 5 мл; тиогликолевая кислота — 0,5 мл; 0,004%-ный нейтральный красный —1 мл. Последующие операции аналогичны определению пектинэстеразы.
Разложение целлюлозы. Для выделения из почвы, подстилки, торфов и других природных субстратов целлюлозоразлагающих микроорганизмов существует ряд методов. Аэробное разложение целлюлозы. Аэробные целлюлозоразлагаю- щие микроорганизмы наиболее полно выявляются с помощью метода почвенных пластинок. Почву обогащают соединениями калия и азота (2 мл 1,5%-ного раствора KN03 на 50—60 г почвы). Обогащенную навеску размешивают, увлажняют и помещают в чашку Петри, на дно которой предварительно кладут стерильные обеззоленные фильтры или фильтровальную бумагу. На поверхность почвенной пластинки также накладывают кружок фильтровальной бумаги и плотно прижимают его к поверхности пластинки. Чашки с пластинками инкубируют во влажной камере. Срок инкубации варьирует в зависимости от свойств почвы. Для дерново-подзолистой почвы этот срок можно ограничить несколькими неделями, для чернозема срок инкубации может быть увеличен. Результаты опыта определяют по степени и характеру разложения бумаги. В дерново-подзолистой почве целлюлозоразлагающие микроорганизмы представлены обычно грибами, в черноземе — мик- собактериями.
Используется также метод накопительных культур. В этом случае- применяют среду Гетчинсона (г/л): КН2Р04— 1,0, NaCl —0,1, СаС12 — 0,1, FeCl3 —0,1, MgS04-7H20 — 0,3, NaN03 — 2,5, дистиллированная вода. Среду наливают в колбочки или пробирки, куда в качестве источника углерода помещают фильтровальную бумагу ( 65). После стерилизации засевают комочками почвы.
Условия накопительной культуры для целлюлозоразлагающих микроорганизмов можно создать, используя метод комочков. На поверхность пластинок кремнекислого геля или голодного агара накладывают кружки фильтровальной бумаги, смоченные раствором Гетчин- сона. Затем на поверхность бумаги раскладывают 25 комочков почвы. Чашки инкубируют в термостате при 25—30° во влажной камере и наблюдают за развитием микроорганизмов. Через несколько недель подсчитывают процент комочков, вокруг которых наблюдается разложение клетчатки, и составляют характеристику развивающихся микроорганизмов на основе их микроскопического исследования. Последний метод может быть использован для количественного определения целлюлозоразлагающих микроорганизмов в почве.
Анаэробное разложение целлюлозы. Для накопительной культуры анаэробных целлюлозоразлагающих микроорганизмов А. А. Имше- нецкий предложил следующие питательные среды. Для накопительной культуры (г/л): NaNH4HP04 • 4Н20 — 1,5, КН2Р04 — 0,5, К2НР04 — 0,5, MgS04 — 0,4, NaCl — 0,1, MnS04 и FeS04 — 1 капля 1%-ного раствора, пептон 5,0, СаС03 — 2,0, фильтровальная бумага — 15,0, рН — 7,0 — 7,4. Для накопительных и чистых культур: мя- со-пептонный бульон — 500 мл, СаС03 — 2 г, фильтровальная бумага — 15 г, водопроводная вода — 0,5 л.
Жидкие питательные среды разливают высоким слоем в высокие пробирки. Фильтровальную бумагу нарезают полосками и опускают на дно пробирки; засевают комочками почвы или навоза и инкубируют в термостате при температуре 30—35° в случае обнаружения мезо- фильных бактерий и при 60° — при поиске термофильных бактерий.
Количественный учет анаэробных целлюлозоразлагающих бактерий проводят методом предельных разведений. Посев производят в несколько параллельных пробирок (не менее 5), которые инкубируют в термостате, просматривают, материалы учета обрабатывают по таблице Мак-Креди. Полученные данные могут, однако, рассматриваться лишь как приблизительные, потому что бактерии трудно смываются с волокон клетчатки, на которых происходит их развитие, и не распределяются равномерно в воде при приготовлении разведений.
При приготовлении препаратов для микроскопирования кусочки разложившейся клетчатки помещают на предметное стекло в каплю воды, разрывают волокна препаровальными иглами, распределяют на стекле, фиксируют и окрашивают.
|
|
|
|
К содержанию книги: И. П. БАБЬЕВА, Г. М. ЗЕНОВА, Д.Г.ЗВЯГИНЦЕВ
|
Последние добавления:
Вильямс. Травопольная система земледелия
Качинский - Жизнь и свойства почвы
Вернадский - химическое строение биосферы